MRSA-Eradikation mit Chlordioxid
Antimikrobiell resistente Infektionen (AMRs) fordern derzeit allein in Europa und den USA jedes Jahr mindestens 50.000 Menschenleben, und viele Hunderttausende sterben in anderen Teilen der Welt. In 15 europäischen Ländern werden mehr als 10 % der Infektionen mit Staphylococcus aureus im Blutkreislauf durch Methicillin-resistente Stämme (MRSA) verursacht.
und mehrere dieser Länder verzeichnen Widerstandsraten von fast 50 %. 1 Während die Zahl der antibiotikaresistenten Infektionen steigt, nimmt die Zahl der neuen Antibiotika ab. 1,2 Daher ist es zwingend erforderlich, dass nach neuen und neuartigen Behandlungsmethoden für UAW gesucht wird, und dies ist die Prämisse dieser Forschung: natürliche Substanzen zu verwenden, um MRSA auszurotten, die keine weiteren Resistenzen erzeugen. In vitro verwendetes Chlordioxid war unser Hauptaugenmerk dieser Forschung, da es im Vergleich zu anderen getesteten Naturstoffen am effektivsten war.
Schlüsselwörter: antimikrobiell resistente Stämme, Methicillin-resistent, Staphylococcus aureu,
Toxisches Schocksyndrom, Erythromycin, Chlordioxid
Abkürzungen: MRSA, Methicillin-resistenter Staphylococcus aureus; AMR. antimikrobiell resistent; TSST-1, Toxin-1 toxisches Schocksyndrom; ClO 2, Chlordioxid, PVL, Panton-Valentine-Leukocidin; MSSA, Methicillin-sensitiver Saphylococcus aureus
Einführung
In Krankenhäusern oder Intensivstationen erworbene nosokomiale Infektionen werden häufig durch antibiotikaresistente Bakterien wie Methicillin-resistente Staphylococcus Aureus (MRSA) verursacht. Diese Antibiotikaresistenz geht mit hohen Morbiditäts- und Mortalitätsraten und hohen Kosten für Gesundheitseinrichtungen einher.
Qué es MRSA?
Staphylococcus aureus ist eine grampositive Kokosnuss, die sowohl Katalase als auch Koagulase + enthält. Staphylococcus aureus hat sich entwickelt, um zahlreiche Immunvermeidungsstrategien zur Bekämpfung des Neutrophilen-vermittelten Todes zu entwickeln, einschließlich Neutrophilen-Aktivierung, Migration zum Infektionsort, bakterielle Opsonisierung, Phagozytose und anschließende Neutrophilen-vermittelte Zerstörung. Bis zu 40 immunabwehrende Moleküle von S. aureus sind bekannt, und für diese abwehrenden Proteine werden neue Funktionen identifiziert.
Sie produzieren eine Vielzahl von Toxinen, darunter Alpha-Toxin, Beta-Toxin, Gamma-Toxin, Delta-Toxin, Exfoliatin, Enterotoxine, Panton-Valentine-Leukozidin (PVL) und Toxic Shock Syndrome Toxin 1 (TSST-1); Enterotoxine und TSST-1 sind mit dem toxischen Schocksyndrom verbunden; Die progressive multifokale Leukenzephalopathie geht mit nekrotischen Infektionen der Haut und der Lunge einher und ist ein wichtiger Virulenzfaktor für Pneumonie und Osteomyelitis. 3
S. aureus exprimiert eine Vielzahl von Virulenzfaktoren, einschließlich
Toxine (Hämolysine und Leukocidine), immunevasive Oberflächenfaktoren (zB Kapsel und Protein A) und Enzyme, die die Gewebeinvasion fördern (zB Hyaluronidase). 3
Eine Besiedelung durch MRSA erhöht das Infektionsrisiko, und infizierende Stämme fallen in bis zu 50–80% der Fälle mit kolonisierenden Stämmen zusammen. 4,5
Fast alles, was mit der Haut in Kontakt kommt, kann als Erreger der Übertragung von MRSA dienen, von Kitteln und Krawatten bis hin zu Stiften und Mobiltelefonen.
Die Kolonisation kann über längere Zeit bestehen bleiben. MRSA kann auch in der häuslichen Umgebung persistieren und Eradikationsversuche erschweren. 6
Gleichzeitig ist die Kolonisation nicht statisch, da festgestellt wurde, dass sich Stämme innerhalb desselben Wirts entwickeln und sogar ersetzen. 7
Arzneimittelresistenz
MRSA hat MGE, das Antibiotikaresistenzgene trägt, bei mehreren unabhängigen Gelegenheiten erworben. Resistenzen gegen Penicillin (blaZ), Trimethoprim (dfrA und dfrK), Erythromycin (ermC), Clindamycin (konstitutiv exprimiertes ermC) und Tetracycline (tetK und tetL) wurden in Insertionssequenzen, Transposons und manchmal Plasmiden in beiden MRSA wie in . identifiziert Methicillin. Anfälliger Staphylococcus aureus (MSSA). 8 Wahrscheinlich aufgrund des starken Selektionsdrucks im Krankenhausumfeld ist Antibiotikaresistenz bei HA-MRSA-Stämmen oft genetisch mit Resistenzen gegen Desinfektionsmittel oder Schwermetalle (zB quartäre Ammoniakverbindungen, Quecksilber oder Cadmium) verbunden. 9
Was ist Chlordioxid?
Die heute kommerziell wichtige Verbindung Chlordioxid (ClO 2) ist keine neue Entdeckung. Das Gas wurde erstmals 1811 von Humphrey Davy durch die Reaktion von Salzsäure mit Kaliumchlorat hergestellt. Dabei entstand "Euchlor", wie es damals genannt wurde. Watt und Burgess, die 1834 die alkalische Zellstoffbleiche erfanden, erwähnten Euchlorin als Bleichmittel in ihrem ersten Patent. 10,11
Chlordioxid wurde später als Bleichmittel und später als Desinfektionsmittel bekannt. Die Herstellung von ClO 2 aus dem Mineral Chlorat ist jedoch kompliziert und das Gas ist explosiv, so dass es nicht möglich ist
bis zur Herstellung von Natriumchloritpulver durch die Olin Corporation im Jahr 1940 praktisch verwendet werden.
Aus dem Chloritsalz könnte nun bei Bedarf Chlordioxid freigesetzt werden. In der kommunalen Wasserversorgung geschieht dies meist durch Zugabe von Chlor zur Chloritlösung und im Labor durch Zugabe einer Säure zur Chloritlösung. Alliger zeigte 1978, 10,11, dass
ClO 2 könnte vom einzelnen Benutzer topisch aufgetragen werden.
ClO 2 ist ein kleines Molekül mit einem Molekulargewicht von 67,46 und bildet ein stabiles Radikal. 12 ClO 2 ist ein Oxidationsmittel, das durch Einfangen eines Elektrons (ClO 2 + e- → ClO 2 -) zu einem Chlorition (ClO 2 -) reduziert wird. Das Redoxpotential (Eº) ist mit 0,95 V relativ hoch, schädigt also das menschliche Mikrobiom nicht. 13,14
Chlordioxid (ClO2)-Lösung
Chlordioxid ist: bakterizid, viruzid, sporizid, zystizid, algizid und fungizid. 15 Chlordioxid, ein starkes Oxidationsmittel, hemmt oder zerstört nachweislich Mikroorganismen in Konzentrationen von 1 bis 100 ppm, die eine starke antivirale Aktivität erzeugen, und inaktiviert > oder = 99,9 % der Viren bei einer 15-sekündigen Sensibilisierung.
15-19
Darüber hinaus kann ClO 2 Biofilme schnell entfernen 20, da es sehr gut wasserlöslich ist und im Gegensatz zu Ozon nicht mit
extrazelluläre Polysaccharide aus Biofilm. Auf diese Weise kann ClO 2 die Biofilme schnell durchdringen, um die darin lebenden Mikroben zu erreichen und abzutöten: ein großer Vorteil, der sich von der Behandlung beider für Natural unterscheidet
und Allopathische Medizin. Es gibt viele Berichte, dass ClO 2 -Lösung eine viruzide Wirkung hat. 21-25 Die Inaktivierungskonzentration gegen
verschiedene Viren sind 1-2 ppm im Poliovirus. 21,22 2,19 ppm im Coronavirus, das SARS verursacht. 23 7.5 ppm beim Hepatitis-A-Virus, 24 und 0,2 ppm beim Rotavirus. 25
Chlordioxid-Sicherheit
Viele Bewertungen haben gezeigt, dass ClO 2 nicht-toxische Verbindungen hat. Fünf Jahrzehnte der Anwendung haben keine negativen Auswirkungen auf die Gesundheit gezeigt.
Die Hauptanwendungsgebiete waren die Desinfektion von Wasserleitungen, die Entfernung unerwünschter Geschmacks- und Geruchsstoffe sowie das Bleichen in der Zellstoff- und Papier- und Textilindustrie.
Toxikologische Tests umfassen die Einnahme von ClO 2 im Trinkwasser, Zusätze zu Gewebekulturen, Injektionen in das Blut, Samen
Desinfektion, 26,27 Desinfektion von Insekteneiern, Injektionen unter die Haut von Tieren und in das Gehirn von Mäusen, Verbrennungen an mehr als 1500 Ratten und Injektionen in Pflanzenstängel. Standardtests umfassen Ames-Mutation, Chinesischer Hamster, Kaninchenauge, Hautabschürfungen, Pharmakodynamik und Teratologie. 28
In einer Studie tranken menschliche Freiwillige ClO 2 oder ClO 2 ¯ in Lösung bis zu 24 ppm und zeigten keine Nebenwirkungen. 28
Mehrere Studien untersuchten die Auswirkungen auf die Reproduktionstoxizität oder Teratologie. Es gibt keine Hinweise auf eine fetale Fehlbildung oder Geburt.
Defekte der ClO 2 -Konzentration, sowohl im Getränk als auch auf dem Hautweg, bis zu 100 ppm. 29-31
Bei längerer Fütterung tritt die Toxizität hauptsächlich in den roten Blutkörperchen auf. Ratten, die 1000 Monate lang chronisch mit 6 mg / l gefüttert wurden, zeigten keine signifikanten hämatologischen Veränderungen. Nach 9 Monaten nahmen jedoch die Anzahl der roten Blutkörperchen, der Hämatokrit und das Hämoglobin in allen Behandlungsgruppen ab.
Fehlende Langzeittoxizität, aber niedrige Ausgangswerte werden in zwei separaten Studien dramatisch veranschaulicht, in denen 32 Ratten und 33 Bienen zwei Jahre lang mit ClO2 in hohen Dosen gefüttert wurden. Bei Zugabe von bis zu 100 ppm in die Wasserversorgung wurden keine schädlichen Wirkungen beobachtet.
Materialen und Methoden
In dieser Forschungsstudie wurde Methicillin-resistenter Staphylococcus aureus (MRSA) verwendet, der auf Blutagarplatten gezüchtet wurde, die von einem lokalen zertifizierten klinischen Labor bereitgestellt wurden.
MRSA-Kultur
In einem Schrank der Sicherheitsklasse 2 wurde von den Blutagarplatten (Columbian Agar) eine MRSA-Probe aus isolierten Kulturen mit einer sterilisierten Öse entnommen und mit 5 ml Tryptic Soy Broth (TSB) in sterile Röhrchen gegeben. Diese Kulturröhrchen wurden 37 Stunden bei 48 Grad Celsius inkubiert. Diese Kulturröhrchen konnten bis zu 4 Tage bei 10 Grad Celsius im Kühlschrank aufbewahrt werden, wofür wiederum Proben hergestellt würden.
Bakterien zählen
Eine der gebräuchlichsten Methoden zur Quantifizierung von Bakterien ist das Zählen von koloniebildenden Einheiten (KBE). Diese weit verbreitete Methode ist einfach, gibt einen guten Überblick über die Lebensfähigkeit der Zellen und ist selbst gegenüber geringen Bakterienkonzentrationen empfindlich.
Ein großer Nachteil ist, dass es Tage dauert, um Ergebnisse zu erhalten, die bestenfalls Schätzungen sind. Eine Kolonie kann aus einer oder tausend Zellen entstehen und die Probenvorbereitung kann von Technologie zu Technologie sowie jedes Mal je nach Probenbedingungen variieren. Aus Gründen der Präzision wurde bei dieser Untersuchung der mikrobielle Zellzähler QUANTOMTx von Logos Biosystems (logosbio.com) verwendet. Es ist ein automatisierter bildbasierter Zellzähler, der einzelne Bakterienzellen in Minuten identifizieren und zählen kann.
Das QUANTOM Tx fokussiert, erfasst und analysiert automatisch mehrere fluoreszenzgefärbte Zellbilder, um Bakterienzellen mit hoher Empfindlichkeit und Präzision zu erkennen. Es enthält einen ausgeklügelten Zellerkennungs- und -entfernungsalgorithmus, der einzelne Bakterienzellen selbst in kleinsten Gruppen genau identifizieren kann. In diesen Experimenten verwenden wir das Viable Cell Staining Kit, um lebende oder lebensfähige Zellen nachzuweisen.
Der Quantom-Zellzähler für mikrobielle Zellen wurde verglichen und als genauso genau befunden wie Durchflusszytometrie- und Hämozytometer-Messungen, reduziert jedoch die Zeit erheblich, da jede Zählung nicht länger als 30 Sekunden dauert und zwischen Gruppen unterschieden werden kann . Gefärbte Zellen werden mit QUANTOM I Cell Loading Buffer gemischt, auf QUANTOM M50 Zellzählobjektträger geladen und in der QUANTOM Centrifuge zentrifugiert, um die Zellen zu immobilisieren und gleichmäßig entlang einer einzigen Fokusebene zu verteilen, um eine konsistente und präzise Zellerkennung zu gewährleisten. Zählergebnisse und Bilder können sofort nach dem Zählen angezeigt und gespeichert werden.
Zur Vorbereitung der Probe für das Quantom wurden 10 Mikroliter (ul) des Kulturmediums mit einer zuvor kalibrierten DLAB-Elektronikpipette entnommen und in ein steriles 1,5 ml Eppendorf-Röhrchen gegeben. Dazu wurden 2 ul Färbefarbstoff für lebensfähige Zellen gegeben und in einem Heraeus-Inkubator bei 37 Grad Celsius für 30 Minuten inkubiert. 8 µl Puffer wurden dieser Probe zugesetzt, um das Fluoreszenzsignal zu verstärken. Um Quantom-Verbrauchsmaterial-Objektträger zu sparen, recyceln wir die Objektträger, indem wir sie in Imrali Inventions iWash® Objektträger-Reinigungssystemen (www.imraliinventions.com) waschen.
Wurde diesen Röhrchen Chlordioxid in unterschiedlichen Konzentrationen für unterschiedliche Dauer zugesetzt? Die Chlordioxidkonzentration reichte von 0,5 µl (0,5 ppm) bis 5 µl (5 ppm) und die Expositionsdauer der Probe reichte von 30 Minuten bis 30 Sekunden.
Für jedes Experiment, basierend auf Zeit und Dauer, wurden zwei Probenröhrchen hergestellt, um den Verdünnungsfaktor konstant zu halten. Abhängig von der Chlordioxidmenge, die in das Versuchsröhrchen gegeben wurde, wurde die gleiche Menge Wasser in das Kontrollröhrchen gegeben.
Aus diesen Kontroll- und Versuchsröhrchen wurden 6 ul der Probe unter Verwendung einer elektronischen Pipette entnommen und auf die M50-Zellzahl-Objektträger gegeben. Die Objektträger wurden für 8 Minuten bei 300 RCF (relative Zentrifugalkraft) in die QUANTOM-Zentrifuge gegeben und dann in den Quantom-Mikrobenzellzähler gegeben, um eine Referenzmessung (Kontrolle) und eine weitere Messung aus dem Experimentierröhrchen durchzuführen.
Die optimale Konfiguration des Quantom Microbial Cell Counter für das MRSA-Protokoll, die wir während des Tests gefunden haben, wurde in Verdünnungsfaktor 2, Mindestgröße des Fluoreszenzobjekts 0.4 um, Maximalgröße des fluoreszierenden Objekts 15 μm Rundheit 50%, Declustering-Stufe 7 und . festgelegt Erkennungsempfindlichkeit 7.
Chlordioxid-Zubereitung
Traditionelles Chlordioxid, genannt MMS, wurde als ein traditionelles Chlordioxid, genannt MMS, hergestellt als eine Lösung unter Verwendung von zwei Komponenten, Natriumchloritlösung (25% Lösung in Wasser) und 4% Salzsäurelösung. Ein Tropfen von jeder dieser Lösungen wurde in ein steriles 1,5 ml Eppendorf-Röhrchen gegeben und 30 Sekunden lang aktiviert. Darüber hinaus wurden weitere Experimente mit einer neuen Generation von Chlordioxid namens CDSplus durchgeführt, einem proprietären Produkt, das von Aquarius Pro-Life als Wasseraufbereitungsprodukt hergestellt wird. Dies ist eine gepufferte Form von Chlordioxid bei einem Standard-pH-Wert von 7 und einer Konzentration von 3000 ppm im aktiven Zustand (250 ml). Aus dem aktivierten CDSplus (250 ml) wurden 83 µl = 1 ppm, 166 µl = 2 ppm extrahiert; 0,25 ml = 3 ppm.
Experimentelle Protokolle
Verschiedene Konzentrationen von Chlordioxid
Es wurden MMS und CDSplus verwendet. Der Bereich war 1 ppm bis 5 ppm. Es wurden die Zeiten von MMS und CDSplus verwendet. Der Bereich war 1 ppm bis 5 ppm. Die Expositionszeit gegenüber Chlordioxid reichte von 30 Minuten bis 30 Sekunden. In ersten Experimenten war nicht klar, welche Zeit für die Hemmung benötigt würde, aber es zeigte sich schnell, dass die Exposition weniger als eine Minute betrug. Die meisten Experimente hatten daher eine Belichtungszeit von 1 Minute.
Ergebnisse Erste Versuche
Wir begannen mit der Einnahme verschiedener Konzentrationen von Chlordioxid in herkömmlichem MMS und testeten diese Konzentrationen mit MRSA in Lösung für verschiedene Zeiträume von 30 Minuten bis 30 Sekunden. 1μl Chlordioxid entspricht einer Konzentration von 1 ppm. Die niedrigste Chlordioxidkonzentration, die in diesen Experimenten zur vollständigen Eradikation von MRSA verwendet wurde, betrug 0,5 ppm bei einer Expositionszeit von 30 Sekunden.
Tabelle 1 unten zeigt die verschiedenen Konzentrationen als Funktion der Zeit, wobei die MRSA-Zellkonzentration vom Quantom-Zellzähler gemessen wurde.Wie Sie sehen, für alle Chlordioxidkonzentrationen von 1 bis 5 ppm und eine Expositionszeit von 30 Minuten bis 30 Sekunden betrug die Hemmung des MRSA-Wachstums während all dieser Experimente 99,99%.
Tabelle 1 Vergleich der Keimzahlen vor und nach Chlordioxid-Exposition.
Experiment 1
Tabelle 2 zeigt die Zellzahlzahlen für die 6 verwendeten Konzentrationen von Chlordioxid, nämlich: 0,5, 1, 2, 3, 4 und 5 ppm wurden verwendet und eine Grundlinienzahl wurde für jede Konzentration gemessen. Versuchsnummer 0 ist die Grundlinien-(Kontroll-)Zählung für jede Versuchsgruppe unter Verwendung unterschiedlicher Konzentrationen von Chlordioxid. Für jede Konzentration wurde das Experiment 5 Mal wiederholt, wobei die mittleren Konzentrationen angegeben wurden.
Da bei den ersten Experimenten festgestellt wurde, dass Chlordioxid 99,99% der MRSA-Bakterien bei Konzentrationen von 5 ppm für nur 30 Sekunden abtötet, verwendeten alle anderen Experimente eine Expositionszeit von einer Minute als Standard, während verschiedene Konzentrationen ausprobiert wurden.
In diesem Experiment wurden ClO2-Konzentrationen von 0,5
- 5 ppm wurden mit dem traditionellen MMS genommen. Bei jeder der 5 Konzentrationen betrug die Hemmungsrate 100 %; siehe Tabelle 2 und Abbildung
- Abbildung 1 zeigt die Wiederholbarkeit der MRSA-Bakterienzählung bei verschiedenen Konzentrationen von 1 bis 5 ppm. Für jede Konzentration wurde eine Grundlinienzählung vorgenommen; dies wurde 5 mal wiederholt. In allen 5 Replikaten betrug die Hemmung des MRSA-Wachstums 100 %.
Abbildung 2 vergleicht die MRSA-Zellzahl mit der MMS-Konzentration über 1 Minute. Die abgedeckte Fläche entspricht der Anzahl der Zellen. Die Anfangszählungen für jede Konzentration werden auf der linken Seite der Grafik angezeigt und die Endzählungen werden auf der rechten Seite der Grafik angezeigt. Die Hemmungsrate betrug 100 % für alle Chlordioxidkonzentrationen bei einer Expositionszeit von 1 Minute.
Abbildung 1 Chlordioxid in verschiedenen Konzentrationen mit MMS
Abbildung 2 Unterschiedliche Konzentrationen von herkömmlichem MMS für eine Dauer von 1 min.
Tabelle 2 Chlordioxid (herkömmliches MMS) in unterschiedlichen Konzentrationen 5-mal wiederholt
Tabelle 3 vergleicht die Konzentrationen von 1, 2, 3, 4 und 5 ppm für eine Tabelle 3 vergleicht die Konzentrationen von 1, 2, 3, 4 und 5 ppm für eine einminütige Exposition gegenüber Chlordioxid. Die Kontrolle wurde mit der experimentellen für die verschiedenen Konzentrationen verglichen. Für alle diese Chlordioxidkonzentrationen betrug die Hemmungsrate 1 %.
Experiment 2: Verwendung von CDSplus
Das gleiche Experiment wie oben wurde unter Verwendung der CDS plus-Generation unter Verwendung von Konzentrationen von 1-3 ppm wiederholt. Bei jeder der 3 Konzentrationen betrug die Hemmungsrate wieder 100 %; siehe Tabelle 4 und Abbildung 3. Abbildung 3 zeigt die MRSA-Zell-Eradikation unter Verwendung verschiedener Konzentrationen von CDSplus, nämlich 1, 2 und 3 ppm. Für die Kontrollgruppe wurde eine Grundlinienzählung gemessen, und dann wurde jede Konzentration von CDS plus zugegeben und zweimal wiederholt.
Für alle Konzentrationen betrug die Hemmungsrate 100 %.
Tabelle 4 vergleicht die Konzentrationen von 1, 2 und 3 pp für eine 60-sekündige Chlordioxid-Exposition unter Verwendung des CDS plus der neuen Generation.
Die Kontrolle wurde mit der experimentellen für die verschiedenen Konzentrationen verglichen.
Abbildung 3 MRSA-CDSPlus mit unterschiedlichen Konzentrationen.
Abbildung 4 vergleicht die MRSA-Zellzahl mit der Konzentration von Chlordioxid (CDS plus) für 1 Minute. Die obere Zeile zeigt die Referenzzellzahl für die Kontrollgruppe. Die untere Zeile zeigt die MRSA-Zellzahlen, nachdem die Zellen 1 Minute lang unterschiedlichen Konzentrationen von Chlordioxid ausgesetzt wurden; die Hemmungsrate betrug 100 %.
Abbildung 4 Unterschiedliche Konzentration von CDSPlus für 60 Sekunden.
Tabelle 4 Chlordioxid (CDSplus) in verschiedenen Konzentrationen für eine einminütige Exposition Tabelle 1 Chlordioxid (CDSplus) in verschiedenen Konzentrationen für eine einminütige Exposition
Schlussfolgerungen
MRSA ist vielseitig und unberechenbar. Ihre genetische Anpassungsfähigkeit und MRSA sind vielseitig und unberechenbar. Seine genetische Anpassungsfähigkeit und das serielle Auftreten erfolgreicher epidemischer Stämme machen ihn nach wie vor zu einer großen Bedrohung für die menschliche Gesundheit.
Die anhaltend hohe Sterblichkeit im Zusammenhang mit einer invasiven MRSA-Infektion, obwohl die FDA seit 2014 mehrere gegen MRSA wirksame Antibiotika zugelassen hat, unterstreicht die Notwendigkeit qualitativ hochwertiger Studien, um das optimale Management für diese Patienten zu bestimmen. In diesen In-vitro-Experimenten wurde die Wirksamkeit von Chlordioxid gegen MRSA mit einer Wachstumshemmung von 99,99% -100% bereits bei kleinsten Konzentrationen von 0,5 ppm durchweg nachgewiesen.
Aufgrund der bisher nachgewiesenen Unbedenklichkeit von Chlordioxid in Tier- und Humanversuchen besteht heute ein dringender Bedarf an qualitativ hochwertigen klinischen Studien zur Bestimmung der Wirksamkeit von Chlordioxid bei MRSA-Infizierten.
Diese Studien werden von der klinischen Gemeinschaft durchgeführt, beginnend mit einzelnen klinischen Studien in verschiedenen Ländern der Welt, mit der Schaffung eines Netzwerks klinischer Studien, um alle Daten zu sammeln und sichere und wirksame klinische Protokolle zu entwickeln. In Bezug auf die Sicherheit wurde in einem sorgfältig konzipierten Experiment festgestellt, dass die charakteristische Zeit, die zum Abtöten einer Mikrobe erforderlich ist, nur wenige Millisekunden beträgt. Da ClO 2 eine relativ flüchtige Verbindung ist, ist seine Kontaktzeit (seine Beständigkeit auf der behandelten Oberfläche) auf wenige Minuten begrenzt.
Während dieser Aufenthalt sicher genug ist (mindestens 3 Größenordnungen länger als der Zeitpunkt des Todes), um alle Bakterien in zu inaktivieren
die Körperoberfläche ist zu kurz, als dass ClO 2 tiefer als einige Zehntel Millimeter eindringen könnte; Daher kann es einem Organismus, der viel größer als ein Bakterium ist, keinen wirklichen Schaden zufügen.
Es gibt auch viele Zeugnisse über die Verwendung von Chlordioxid durch menschliche Freiwillige zur Ausrottung vieler Infektionskrankheiten, einschließlich Malaria und HIV, aber einer der Pioniere in Afrika, Jim Humble. Es gibt viele Kontroversen über diese anekdotische Beweise, aber die Zahl der Zeugen, die aussagen, kann nicht ignoriert werden: Politik und persönliche Interessen müssen beiseite gelegt werden und die Wissenschaft muss die Beweise zum Wohle der Menschheit untersuchen! 34,35
Referenzen und Originaldokument unter folgendem Link:
